嚴瑋桐

(九江市檢驗檢測認證中心食品分中心，江西九江 332000)

摘要：目的：探討高效液相色譜法(HPLC)測定海水魚中嘌呤含量的方法和效果。方法：選擇新鮮的海鱸魚、黃花魚、鱈魚3種海水魚類，建立HPLC檢測方案，優化色譜條件後測定樣品不同部位的腺嘌呤、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤含量。結果：4種嘌呤在0.1～400 mg/L的濃度範圍內，具有良好的線性關係，相關係數均≥0.998，檢出限在0.047～0.106 mg/L，在0.021%～0.689%，平均回收率在94.289%～102.919%。不同海水魚中的嘌呤含量差異明顯，總嘌呤含量海鱸魚>鱈魚>黃花魚;同一海水魚不同部位的嘌呤含量差異明顯，總體上魚皮>內髒>魚肉。結論：HPLC法測定海水魚中嘌呤含量的精密度高、回收率好，是一種可行的檢測方案。

關鍵詞：海水魚;嘌呤;HPLC;含量測定;精密度

1　材料與方法

1.1　原料

本次試驗所用的海水魚，選擇新鮮的海鱸魚、黃花魚、鱈魚3種魚類，均購置某水產市場。

1.2　儀器和試劑

電子天平、HPLC儀、pH計、紫外-可見分光光度計、超聲清洗器、冷凍高速離心機、真空旋轉蒸發儀、絞肉機、電熱恒溫水槽和超純水係統等。

色譜級的腺嘌呤、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤，純度均>99%;色譜純甲醇、四丁基氫氧化銨、冰乙酸、三氟乙酸;分析純甲酸、高氯酸等。

1.3　實驗方法

1.3.1　色譜條件

(1)流動相。參考曲欣[1]的研究，色譜柱：Agilent ZORBAX Eclipse XDB-C18，4.6 mm×250 mm，5 μm;流動相：水-甲醇-冰乙酸-20%四丁基氫氧化銨，體積比：879∶100∶15∶6;柱溫：30 ℃，流速：1 mL/min，進樣量：10 μL，檢測波長：254 nm。在此基礎上進行優化，確定最佳流速和檢測波長。

(2)流速。流動相確定後，選擇3種流速分離嘌呤，分別是0.8 mL/min、1 mL/min、1.2 mL/min，對比確定最佳流速。結果顯示：這3種流速均能在10 min內完成嘌呤的分離，其中0.8 mL/min分離效果最好，峰型最明顯，因此確定最佳流速是0.8 mL/min。

(3)檢測波長。配置嘌呤溶液，濃度為10 mg/L，然後進行全光譜掃描，設置範圍在200～400 nm，從而確定適宜檢測波長。結果顯示：嘌呤溶液在200～300 nm有吸收峰，腺嘌呤、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤的最大吸收波長分別是265 nm、271 nm、254 nm、278 nm。INAZAWA[2]的研究中，波長選擇為260 nm;其他學者的研究中有254 nm、255 nm等[3-4]。本次試驗分析，發現幾種波長的檢測結果沒有明顯差異，最終選擇254 nm為檢測波長。

經過優化，最終確定色譜條件：Agilent ZORBAX Eclipse XDB-C18色譜柱，4.6 mm×250 mm，5 μm;流動相是水-甲醇-冰乙酸-20%四丁基氫氧化銨，體積比為879∶100∶15∶6;柱溫30 ℃，流速為0.8 mL/min，檢測波長為254 nm，進樣量為10 μL。

1.3.2　樣品處理

對海水魚樣品進行處理，目前已知方法有超聲法、高氯酸法、混合酸法等。其中，超聲法雖然操作簡單，但嘌呤的提取率低。高氯酸法操作步驟複雜，等待時間長，容易生成氯氣，會危害人身健康。混合酸法不僅對嘌呤的提取率高，而且甲酸對嘌呤具有保護作用。本研究最終采用混合酸法進行樣品處理，混合酸的組成是：三氟乙酸和甲酸，兩者的體積比是1∶1。

2　結果與分析

2.1　標準曲線

配製單一標準儲備液，濃度為1 600 mg/L，置於冰箱內在4 ℃恒溫下保存。取等體積4種嘌呤的單一標準儲備液，配製混合標準儲備液，濃度為4 00 mg/L。然後加入超純水稀釋處理，配製出不同濃度的溶液，分別是200 mg/L、100 mg/L、50 mg/L、10 mg/L、5 mg/L、1 mg/L、0.5 mg/L和0.1 mg/L。這些溶液使用0.45 μm的微孔濾膜過濾，然後進行色譜分析，檢出限是3倍信噪比對應的濃度。

根據優化後的色譜條件，檢測混合標品中的嘌呤含量。以樣品濃度作為軸，以峰麵積作為軸，進行線性回歸分析，得出回歸方程，並計算相關係數，見表1。結果顯示，這4種嘌呤在0.1～400 mg/L的濃度範圍內，具有良好的線性關係，相關係數≥0.998，檢出限在0.047～0.106 mg/L。

2.2　精密度

采用優化後的色譜條件，對300 mg/L的混合標品連續進樣6次，根據每一次的測定結果，計算相對標準偏差(RSD)，見表2。結果顯示，6次進樣測定值的在0.021%～0.689，說明該方法的精度較高。

2.3　加標回收率

使用電子天平準確稱量海鱸魚的魚肉樣品2.4 g，平均分為12份，每份樣品0.2 g。采用混合酸法進行處理，並根據優化後的色譜條件進行檢測。按照嘌呤含量的0.5倍、1.2倍，分別加入嘌呤標準品，配製成不同濃度的樣品，每個樣品測定3次，計算回收率和值，見表3。結果顯示，4種嘌呤的平均回收率在94.289%～102.919%，說明該方法處理樣品能減少嘌呤的損失量。

2.4　嘌呤含量測定結果

對3種海水魚樣品，分別選擇魚肉、魚皮和內髒3個部位，按照1.3.2方法進行處理，采用優化後的色譜條件進行檢測，得到4種嘌呤含量，並計算總嘌呤含量，見表4。分析可知：①不同海水魚中的嘌呤含量差異明顯，海鱸魚的次黃嘌呤和黃嘌呤含量最高，黃花魚的腺嘌呤含量最高，鱈魚的鳥嘌呤含量最高，總嘌呤含量海鱸魚>鱈魚>黃花魚;②同一海水魚中，不同部位的嘌呤含量差異明顯，內髒中的腺嘌呤和黃嘌呤含量最高，魚皮中的鳥嘌呤含量最高，魚肉中的次黃嘌呤含量最高，總體上魚皮>內髒>魚肉。

3　結論

HPLC技術具有高壓、高速、高靈敏度、進樣量少和環保的特點[5]。本次研究針對海鱸魚、黃花魚、鱈魚3種海水魚類，建立HPLC檢測方案，優化色譜條件後測定樣品不同部位的腺嘌呤、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤含量，結論如下。

(1)選用Agilent ZORBAX Eclipse XDB-C18色譜柱，4.6 mm×250 mm，5 μm;以水-甲醇-冰乙酸-20%四丁基氫氧化銨為流動相，體積比為879∶100∶15∶6;柱溫30 ℃，流速為0.8 mL/min，檢測波長為254 nm。經試驗證實，4種嘌呤在0.1～400 mg/L的濃度範圍內，具有良好的線性關係，精密度較高，回收率良好。

(2)總嘌呤含量方麵：海鱸魚>鱈魚>黃花魚;不同部位方麵：魚皮>內髒>魚肉。為避免人體內嘌呤含量增高，預防高尿酸血症和痛風，提示人們少食用海鱸魚，合理食用鱈魚、黃花魚;優先食用魚肉，減少魚皮和內髒的攝入量。

參考文獻

[1]曲欣,林洪,隋建新.高效液相色譜法測定食品中嘌呤含量[J].中國海洋大學學報(自然科學版),2014,44(12):41-47.

[2]INAZAWA K,SATO A,KATO Y,et al.Determination and profiling of purines in foods by using HPLC and LC-MS[J].Nucleosides, Nucleotides and Nucleic Acids,2014,33(4/6):439-444.

[3]呂兵兵,張進傑,儲銀,等.反相高效液相色譜法檢測帶魚糜中的嘌呤含量[J].中國食品學報,2012,12(7):192-198.

[4]鄭麗婷,王瑞恒,樂虹雯,等.高效液相色譜法測定啤酒中嘌呤含量[J].現代食品,2021(15):205-209.

[5]張敏敏.超高效液相色譜技術在世界杯賽程預測檢測中的應用研究進展[J].乳業科學與技術,2019,42(3):51-56.